發酵乳克弗爾分離菌株Liquorilactobacillus nagelii K38對神經微膠質細胞發炎反應之調控

報告時間:2026-6-12
報告地點:407視聽教室
指導老師:陳彥伯 老師
學生:王奕脩
摘要

神經發炎(neuroinflammation)是中樞神經系統(central nervous system, CNS)受到感染、損傷、毒性刺激或異常蛋白聚集後所產生的免疫與發炎反應,其特徵包括微膠質細胞(microglia)活化、白血球浸潤,以及免疫細胞與神經膠細胞(neuroglia)之間的交互作用。當神經發炎反應持續存在時,會伴隨氧化壓力增加與免疫失衡,進一步造成神經毒性、神經元損傷與神經退化。近年研究指出,腸道菌相–腸–腦軸(microbiota–gut–brain axis)可透過代謝物、免疫訊號與神經傳導路徑雙向調控腸道與大腦功能,而腸道菌相失衡可能導致脂多醣(lipopolysaccharide, LPS)等發炎相關物質進入循環系統,進一步活化小膠質細胞上的Toll-like receptors(TLRs),啟動NF-κB與MAPK訊息傳遞途徑,促使促發炎細胞激素生成並加劇神經發炎反應。因此,調控小膠質細胞活化與神經發炎相關路徑,被認為是改善神經發炎的重要策略。克弗爾(kefir)為一種傳統多元菌種酒精性發酵乳,而Liquorilactobacillus nagelii K38為分離自克弗爾之菌株,已被證實其發酵物在神經元細胞中具有抗氧化與調控多巴胺之效果,且可以改善過動症大鼠之學習能力與增加神經元細胞。因此,本研究進一步以L nagelii K38作為研究菌株,並收集其無菌發酵上清液(cell-free fermentation supernatant, CFS),探討其是否具有抗神經發炎效果,並且探討其體外益生菌特性,以做為未來商業化開發之評估。研究中首先進行生長曲線、耐酸測試與耐膽鹽測試;結果顯示,K38在酸性與膽鹽環境下皆具有良好耐受能力,顯示其具備通過胃腸道環境之潛力。接著,本研究以LPS誘導BV-2神經微膠質細胞株產生發炎反應,建立體外神經發炎模型,並評估K38 CFS對發炎反應之影響。結果顯示,LPS雖未顯著降低BV-2細胞存活率,但可明顯增加一氧化氮(nitric oxide, NO)生成,成功誘導發炎反應。而不同濃度K38 CFS處理後,BV-2細胞存活率皆維持在100%以上,顯示其不具明顯細胞毒性;同時K38 CFS可顯著抑制LPS所誘導之NO生成,因此後續選擇5%與7.5% CFS作為試驗濃度。進一步分析發炎相關因子,結果顯示K38 CFS可降低促發炎細胞激素TNF-α與IL-6之分泌,並具有調節抗發炎細胞激素IL-10表現之潛力。此外,K38 CFS亦可顯著抑制與發炎及血腦障壁破壞相關之MMP-9表現。在訊號傳導路徑方面,LPS刺激後會活化NF-κB訊息傳遞途徑,使p-NF-κB p65表現增加並伴隨IκBα表現下降;然而加入K38 CFS後,p-NF-κB p65表現下降,而IκBα則呈現回升趨勢,顯示K38 CFS可能透過抑制NF-κB訊息傳遞途徑,進一步降低BV-2細胞發炎反應。本研究後續將會以過動症大鼠模式,探討K38活菌或其後生元,於活體中降低神經發炎之能力。綜上所述,L. nagelii K38 CFS具有調控神經微膠質細胞發炎反應與抑制神經發炎之潛力,未來可望作為神經發炎相關疾病之腸道菌調節策略的潛在應用。
 
關鍵字:神經發炎、腸–腦軸、無菌發酵上清液、益生菌、克弗爾

參考文獻
  • 黃承佑。2025。自克弗爾篩選具抗神經細胞氧化毒性之潛力益生菌並應用於注意力不足過動症大鼠模型。國立中興大學動物科學系碩士論文。台中市。台灣。
  • Allahyari, P., S. A. Torki, B. A. Kavkani, Z. Mahmoudi, M. S. M. Hoseini, M. Moradi, F. Alami, M. K. Mohammadian, S. B. S. Bani, K. A. Mobarakeh, H. Shafaei, S. Khoshdooz, A. Hajipour, S. Doaei, and M. Gholamalizadeh. 2024. A systematic review of the beneficial effects of prebiotics, probiotics, and synbiotics on ADHD. Neuropsychopharmacol. Rep. 44:300–307.
  • Deng, W., P. Yi, Y. Xiong, J. Ying, Y. Lin, Y. Dong, G. Wei, X. Wang, and F. Hua. 2024. Gut metabolites acting on the gut–brain axis: regulating the functional state of microglia. Aging Dis. 15:480–502.
  • Faraone, S. V., R. H. Perlis, A. E. Doyle, J. W. Smoller, J. J. Goralnick, M. A. Holmgren, and P. Sklar. 2005. Molecular genetics of attention-deficit/hyperactivity disorder. Biol. Psychiatry. 57:1313–1323.
  • Gargus, M., B. Ben-Azu, A. Landwehr, J. Dunn, J. P. Errico, and M.-È. Tremblay. 2025. Mechanisms of vagus nerve stimulation for the treatment of neurodevelopmental disorders: a focus on microglia and neuroinflammation. Front. Neurosci. 18:1527842.
  • Lewis, N., A. Villani, and J. Lagopoulos. 2025. Gut dysbiosis as a driver of neuroinflammation in attention-deficit/hyperactivity disorder: a review of current evidence. Neuroscience. 569:298–321.
  • Loh, J. S., W. Q. Mak, L. K. S. Tan, C. X. Ng, H. H. Chan, S. H. Yeow, J. B. Foo, Y. S. Ong, C. W. How, and K. Y. Khaw. 2024. Microbiota–gut–brain axis and its therapeutic applications in neurodegenerative diseases. Signal Transduct. Target. Ther. 9:37.
  • Lukas, K., J. Nguyen, C. Necas, K. Dave, and V. Venketaraman. 2025. Targeting the NF-κB pathway in cancer: mechanisms, resistance, and therapeutic potential across tumor types. Pharmaceuticals (Basel). 18:1764.
  • Lyman, M., D. G. Lloyd, X. Ji, M. P. Vizcaychipi, and D. Ma. 2014. Neuroinflammation: the role and consequences. Neurosci. Res. 79:1–12.
  • Shi, F.-D., and V. W. Yong. 2025. Neuroinflammation across neurological diseases. Science. 388:eadx0043.